Thalles de Porphyra et ses crampons (photo de MBARA sur internet) |
Unités de culture des filaments conchocelis |
Récolte manuelle |
Récolte avec machine spéciale |
Traitement de Porphyra |
Sushi cuisiné selon différentes formes |
En Chine, le Porphyra haitanensis est présent dans les zones méridionales, tandis que le P. yezoensis est trouvé dans le nord. Le cycle de vie qui s'appelle généralement nori ou laver, comporte les thalles des espèces (voir le n.1 dans la figure ci-dessous), qui émergent en automne ou en début d'hiver le long des côtes rocheuses. Ses graines s'appellent conchospores et sont libérées par le stade conchocelis filamenteux (voir le n. 8 dans la même figure), elles sont trouvées fixées sur des coquilles de mollusques en été et en automne. Avant 1949, le stade filamenteux était considéré comme une espèce séparée, Conchocelis rosea.
Schema du cycle de developpement du Porphyra spp. - A = Porphyra yezoensis; B = Porphyra haitanensis. 1 thalles; 2 spermagonie; 3 sperme; 4 carpogone; 5 oeuf fertilisé; 6 carposporange; 7 carpospore; 8 conchocelis filamenteux; 9 branche de sporanges des conchocelis; 10 libération des conchospores; 11 conchospore; 12 thalles jeunes; 13 monospore et thalles jeunes |
Élevage de conchocelis
Comme il a été précédemment mentionné dans cette fiche d'information, l'élevage du nori se produit en deux étapes. La première c'est la culture à l’intérieur, allant de mai jusqu'à octobre, où le stade conchocelis est cultivé et les conchospores se produisent. La deuxième étape a lieu à partir d'octobre jusqu'à avril ou mai; dans cette phase les algoculteurs se concentrent sur la culture des thalles sur le terrain.
Vers début et mi-mai, les cythérées communes (Meretrix meretrix) sont semées en desséchant les conchocelis pour libérer les conchospores; le substrat est alors aspergé par ces conchospores en suspension, ou bien il est submergé dans la suspension. La culture a lieu dans de grands réservoirs ovales peu profonds remplis de 20-30 cm d'eau de mer qui a été soumise à la sédimentation et à laquelle ont été ajoutés des aliments azotés et du phosphate. A ce stade, la température n'est pas contrôlée, elle varie avec la température ambiante. Cependant, la croissance optimale se produit à une température entre 20-25 °C. Les carpospores se développent dans la phase conchocelis.
De la mi-mai jusqu'au début juin, la température d'eau augmente à 22-23 °C, pour stimuler le développement végétatif de la phase conchocelis. En juillet, l'intensité de la lumière est réduite pour inciter la formation des conchosporanges, qui vont, par la suite, libérer les conchospores. A partir du début juillet jusqu’à fin août, la température d'eau augmente graduellement pour atteindre 27-28 °C à la mi-août. Après, la température d'eau commence à diminuer progressivement de nouveau.
Dès fin août jusqu'à fin septembre, la température d'eau baisse à 23 °C; c’est la période de formation des conchosporanges. L'intensité de la lumière est tenue au même niveau pour encourager la formation des conchospores dans le conchosporange et la longueur du jour est réduite à 8-10 heures. Les conchospores se forment en fin septembre mais le phénomène en masse se produit au début et à la mi-octobre.
Une fois les conchospores sont libérés, ils sont semés sur des filets de culture spéciaux qui sont placés dans des bassins. Quand 50 000 spores sont libérées par jour, l'intensité de la lumière est augmentée légèrement pour stimuler la germination des thalles. De même, l'eau dans les bassins est agitée pour une distribution uniforme des spores et pour assurer leur contact avec les filets de culture. Cette opération s'appelle «collecte des graines». Environ 50 pour cent des fermes de laver procèdent, eux-mêmes, à l'élevage des semences, alors que le reste achète des filets de culture chez les fournisseurs de graines.
Trois méthodes d'élevage du Porphyra spp.
MALADIE | AGENT | TYPE | SYNDROME | MESURES |
Chytridiose | Olpidiopsis sp. | Champignon | Moisissure; produits de mauvaise qualité; production réduite | Réduction de la densité des filets de culture; amélioration de la gestion des premiers stages |
Moisissure | Pythium sp. | Champignon | Moisissure; produits de qualité inférieure; production réduite | Séchage des filets d'élevage; réduire la température |
Bactérie filamenteuse | Leucothrix mucor | Bactérie | aucune information | Séchage des filets d'élevage |
Atrophie | N'est pas connu | N'est pas connu | Les thalles infectés sont agaric (comme des champignons) et couleur sombre | Aucune mesure connue |
Maladie des pores | N'est pas connu | Bactéries Gram-négatif | Les microbes pathogènes absorbent les aliments des thalles, faisant apparaître des trous | Réduction de la salinité en cas de culture dans les laboratoires; aucune mesure en cas d'élevage dans la nature |
Pourriture verte | Pseudomonas sp. | Bactéries Gram-négatif | Moisissure | Séchage des filets de culture; réduire la densité de plantation |
Décoloration | Stress environnemental | La couleur des thalles change de pourpre à verte jaunâtre et puis à blanche | Réduire la densité de stockage |
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