FERME PILOTE AQUACULTURE DE CREVETTES MAG 88/006 NOSY-BE MADAGASCAR RAPPORT TECHNIQUE D'ELEVAGE No3 ECLOSERIE CYCLE 2 |
Du 31 Octobre 1989 au 27 Décembre 1989
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CHAPITRE I: ELEVAGE DES GENITEURS - MATURATION
111- Alimentation
112- Paramètres biotechique
113- Statistiqua d'élevage
121- Alimentation
122- Paramètres biotechique
123- Statistiqua d'élevage
124- Résultats
CHAPITRE II: PONTE ET ECLOSION
21- Pontes P. indicus
22- Pontes P. monodon
CHAPITRE III: ELEVAGE LARVAIRE
311- Condition biotechnique
312- Alimentation
313- Survie
321- Elevage no5
322- Elevage no6
323- Elevage no7
CHAPITRE IV: ELEVAGE EN NURSERY
41- Alimentation
42- Paramètres biotechniques
43- Résultats
431- P. indicus
432- P. monodon
44- Bilan alimentation
45- Discussion
51- Milieu de culture
52- Condition de culture
53- Diagramme de culture
54- Résultats
Pour la deuxième production de post-larves en écloserie nécessaire au réensemencement des bassins (cycle de grossissement no2), ce sont toujours P. monodon et P. indicus qui ont été utilisées
Les géniteurs proviennent du milieu naturel après un stockage de plusieurs mois en bassin.
Les P. indicus ont été récoltées matures dans le bassin géniteur. Sans épédonculation, 6 femelles sur 10 passéés en pondoir ont donné 1100000 Nauplii. L'élevage larvaire réalisé avec microparticule et artemia s'est terminé à P5 avec 80% de survie. Le survie en nursery de P5 à P17 est de 85% pour des crevettes de 16 mg. L'ensemencement des 340000 P15 a eu lieu le 15/12/89.
Pour P. monodon, il a été nécessaire d'épédonculer pour obtenir des maturations et des pontes de bonnes qualitées. L'élevage larvaire démarré avec 600000 Nauplii a donné 540000 post-larves (90% de survie) alimentées également avec microparticules et artemia. La survie en nursery de P5 à P17 a été de 86% et le poids moyen des crevettes est de 7,4 mg. L'ensemencement des 300000 P17 a eu lieu le 26 et 27 Décembre 1989.
LISTE DES TABLEAUX
1 Paramètres biotechniques (géniteurs)
2 Statistique d'élevage (géniteurs)
3 Paramètres biotechniques (maturation)
4 Statistique d'élevage (maturation)
7 Résultat synthetique d'élévage larvaire P. indicus
8 Résultats synthetique d'élévage larvaire no5 P. monodon
9 Résultat synthetique d'élévage larvaire no6 P. monodon
10 Résultat synthetique d'élévage larvaire no7 P. monodon
11 Paramètres biotechniques (nursery)
12 Bilan d'alimentation P. indicus
13 Bilan d'alimentation P. monodon
14 Résultat d'élevage en nursery P. indicus
15 Résultat d'élevage en nursery P. monodon
17 Résultats des deux cycles d'élevages
L'élevage des géniteurs se fait dans un bassin en terre de 1847, m2 de surface et de 100 cm de profondeur moyenne.
Les géniteurs provenant du bassin à marée et de la pêche sont transférés dans ce bassin à partir du mois de juin 1989.
Ce stockage des géniteurs permet d'avoir à tout moment des animaux prêt à être transférés en maturation pour les besoins de l'écloserie.
L'aliment est constitué de crabes et de granulés PRESIDENT distribué à 2% de la biomasse existante. La distribution se fait chaque jour à 17 heures 30.
Paramètres | Minimum | Moyenne | Maximum |
Température ( matin / soir ) | 24, 5 / 26 | 29, 5 / 28, 5 | 29 / 31 |
Oxygène ( mg / l ) | 4, 5 | 6, 2 | 10 |
Salinité ( ‰ ) | 28 | 35 | 39 |
Secchi ( cm ) | 70 | ||
Renouvellement d'eau: | en continu |
Tableau no 1: Paramètres biotechniques
Le nombre des crevettes ensemencées et récoltées est donné dans le tableau suivant :
P. indicus | P. monodon | |||
Date | Ensemencement | Récolte | Ensemencement | Récolte |
25 /06 /89 | 334 | 41 | ||
05 /07 /89 | 32 | 20 | ||
24 /10 /89 | 141 | 13 | ||
25 /10 /89 | 30 | 9 | ||
26 /10 /89 | 44 | 10 | ||
TOTAL | 366 | 215 | 61 | 32 |
SURVIE | 58, 7 % | 52, 4 % |
Tableau no2: Statistique d'élevage
On constate une forte mortalité aussi bien pour les P. indicus que pour les P. monodon. Les raisons de cette mortalité peuvent être:
C O N C L U S I O N
Malgré le taux de mortalité assez élevé, observé dans ce bassin, certaines femelles P. indicus présentent des signes de maturation, ce qui est très positif et démontre ainsi la viabilité du système.
Lors de la récolte du bassin à marée en fin de premier cycle de grossissement, des P. monodon ont été transférées dans le bassin géniteur à une densité inférieure à 1 / m2. Ces animaux vont grossir très rapidement et seront utilisés comme géniteurs pour les prochains cycles d'écloserie.
L'utilisation contrôlée d'un stock de géniteurs dans la ferme est un objectif à atteindre afin de travailler en complète indépendance vis à vis de la pêche.
Après vidange du bassin géniteur le 31 /10/ 89, les animaux sont transférés dans un bac NURSERY de 100 m3 afin de pouvoir être sélectionnés.
Les P. monodon proviennent surtout d'un lot rapporté par un bateau car l'effectif récolté dans le bassin géniteur ne nous permet pas de sélectionner suffisamment de crevettes mâles et femelles aptes à passer en maturation.
Comme pour le premier élevage, les aliments pour les géniteurs sont composés des produits frais (crabes, calmars, huîtres, Pyrasus sp…)
Les paramètres biotechniques de l'élevage sont donnés par le tableau suivant:
Paramètres | P. indicus | P. monodon |
Température(°c) | ||
minimale | 27, 5 | 27, 5 |
moyenne | 28 | 28, 7 |
maximale | 29, 6 | 30 |
Salinité (‰) | ||
minimale | 35 | 35 |
moyenne | 36 | 36 |
maximale | 37 | 37 |
Renouvellement d'eau (%) | 150 à 200 | 150 à 200 |
Charge (g / m2) | 325 | 525 |
Sex Ratio (mâles / femelles) | 1, 3 | 1, 2 |
Tableau o3: Paramètres biotechniques
Les renseignements concernant les statistiques d'élevage sont les suivants :
P. indicus | P. monodon | |
Date d'entrée | 31/10/89 | 31/10/89 |
Date de sortie | 28/11/89 | 13/12/89 |
Durée du séjour | 29 jours | 44 jours |
Effectif au départ | 42 mâles 32 femelles | 21 mâles 21 fem |
Rajout | 6 mâles 4 fem | |
Effectif à la sortie | 41 mâles 32 femelles | 16 mâles 4 fem |
Taux de survie | 94 % | 50 % |
Date d'épédonculation | 9/11/89 | 17/11/89 |
Tableau no4: Statistique d'élevage
La mortalité importante de P. monodon avait déjà commencé à l'arrivée du stock dans le bac NURSERY. Les animaux ont mal supporté les conditions de transport à bord du bateau et ceci s'est répercuté durant tout l'élevage, provocant la mortalité tout d'abord des femelles puis ensuite des mâles.
La maturation et les pontes obtenues avec les géniteurs de P. indicus et P. monodon est traitée dans le chapitre II PONTE et ECLOSION.
C O N C L U S I O N
Pour P. indicus les maturations et les pontes se font sans difficulté, la plupart des femelles sont déjà matures dans le bassin géniteur.
Par contre pour les P. monodon le stock utilisé au cours de ce cycle a eu un démarrage difficile avec une mortalité importante des le début.
Lors du transfert, en fin de cycle de maturation, du bac de maturation au bassin géniteurs on observe que 70 % des femelles de P. indicus sont matures et 50% pour P. monodon.
Pour un meilleur contrôle des maturations et pontes de P. monodon, il faut travailler avec un lot de géniteurs en parfait état et suivre individuellement les femelles.
Les pontes ont débuté le 10 / 11 / 1989 pour l'espèce P. indicus et le 21 / 11 / 1989 pour P. monodon. les résultats sont résumés dans le tableau suivant.
dates | bac No | PONTES P. indicus | OEUFS | ECLOSIONS | |||||||||
femelles | ayant pondu mise en bac | Poids des femelles ayant pondu (g) | nombre d'oeufs | % oeufs fécondés | nb oeufs fécondés | 0°C | S‰ | nombre Nauplii | % éclosion | ||||
O°C | S‰ | total | par femelle | ||||||||||
10-11-1989 | 1 | 29 | 35 | 4 / 5 | 51/52, 7/52, 7/50NEP | 1170000 | 285000 | 80 | 936000 | 28,5 | 36 | 1100000 | 63 |
10-11-1989 | 2 | 29 | 35 | 2 / 5 | 48/50NEP+partielle | 1000000 | 250000 | 80 | 800000 | 28,5 | 36 |
Tableau no5: Pontes P. indicus
Les femelles utilisées pour ce cycle de maturation et ponte sont d'un poids moyen supérieur à celles utilisées au cours du cycle 1 : 50 g de poids moyen contre 35 g. Sorties matures du bassin géniteur, il n'a pas été nécessaire de les épédonculer, les maturations et les pontes ont donc été obtenues très facilement.
la quantité d'oeufs par femelle augmente ainsi que le pourcentage d'éclosion. Une seule série de ponte le 10 / 11 / 1989 a suffit à remplir les quatre bacs d'élevage larvaire pour un cycle unique de production de post-larves.
La mise en ponte des femelles monodon est un peu plus difficile, les pontes et les éclosions ont été très variables, les raisons peuvent être:
stock de géniteurs provenant du milieu naturel, ayant été stressé au cours du transport, entraînant une mortalité très élevée avant et pendant le passage en bac de maturation.
épédonculation de seulement la moitié des femelles, l'autre moitié présentant des signes de maturation mais sans donner de pontes, a entraîné un retard pour l'obtention de belles maturations.
Conclusion: il faudra à l'avenir travailler avec un stock sélectionné de géniteurs provenant des bassins et épédonculer toutes les femelles au moins 15 j avant la date désirée.
Le marquage individuel des femelles sera nécessaire pour connaître l'évolution des maturations. Toutes les femelles matures seront passées en pondoir afin d'avoir des données plus précises sur la quantité et la qualité des oeufs obtenus avec l'ensemble des femelles au cours d'un cycle entier de maturation.
L'alimentation fraîche qui leur est distribuée (têtes de crevettes, huîtres, conus, crabes, calmar) bien qu'étant suffisante n'agit pas sur la quantité des pontes. Le granulé sec “NIPPAI” reconnu pour avoir un effet très positif sur la quantité des pontes, sera utilisé lors du prochain cycle de maturation.
dates | bac No | PONTES P. monodon | OEUFS | ECLOSIONS | |||||||||
femelles | ayant pondu mise en bac | Poids des femelles ayant pondu (g) | nombre d'oeufs | % oeufs fécondés | nb oeufs fécondés | 0°C | S‰ | nombre Nauplii | % éclosion | ||||
O°C | S‰ | total | par femelle | ||||||||||
21-11-1989 | 2 | 29 | 37 | 1 / 1 | 150 EP | 1100000 | 1100000 | 90 | 990000 | 28, 5 | 35 | 760000 | 76 |
24-11-1989 | 2 | 29 | 36 | 1 / 2 | 147 EP | 600000 | 600000 | 20 | 120000 | 28, 5 | 34 | 90000 | 75 |
26-11-1989 | 2 | 29 | 35 | 1 / 2 | 187 EP | 1100000 | 1100000 | 70 | 770000 | 29, 5 | 35 | 90000 | 11 |
27-11-1989 | 2 | 29 | 35 | 1 / 2 | 100 EP | 100000 | 100000 | 5 | 5000 | 29, 5 | 35 | 500 | 10 |
28-11-1989 | 2 | 29, 5 | 35 | 1 / 1 | 190 EP | 1500000 | 1500000 | 50 | 750000 | 30, 0 | 36 | 600000 | 80 |
02-12-1989 | 1 | 29, 5 | 35 | 1 / 1 | 183 EP | 1500000 | 1500000 | 70 | 1050000 | 29, 5 | 35 | 900000 | 90 |
Moyennes | - | 29, 1 | 35,5 | 6 / 9 | 159, 5 EP | - | 980000 | 50, 8 | - | 29, 2 | 35 | - | 63, 6 |
Tableau no6: Pontes P. monodon
Les moyennes des températures et de salinités sont plus élevées que lors du premier cycle (27°9 contre 26°8 et 36, 5‰ contre 34, 5‰). Ces conditions ont accéléré la durée de l'élevage. Nous avons des post-larves P4 en 12 jours.
Les pontes ayant été obtenues plus rapidement que prévu , la salle d'algue n'a pu fournir l'alimentation nécessaire au stade Zoé. La distribution des aliment a donc été faite six fois par jour et uniquement avec des microparticules et des artemia. La ration en microparticules varie de 0, 015 à 0, 200 mg/larve/jour et en artemia de 10 à 40 nauplii par larve par jour. Les besoins en microparticules sont plus élevés à température plus forte par rapport au premier cycle.
Les traitements antibiotique et antifongique sont identiques à ceux du premier cycle.
Les survies sont bonnes (72 à 87 %), une mortalité a été constatée au début de l'élevage (passage stades Nauplii-Zoe). Sur 1100000 Nauplii nous avons récolté 878 000 P4 en fin d'élevage, soit un survie moyenne de 80 %.
Température | Salinité | Nauplii par bac |
28, 6 | 36, 5 | 280000 |
Changement d'eau avec filtres de 250 et 500 microns | Nauplii: CT 1500 l | |
Zoés 1 : 1700 l | ||
Zoés 2 : 2000 | ||
Zoés 3 : CP 50% du volume | ||
Mysis 1 à P4: CP 100% | ||
Lumière | Nauplii: lumière naturelle De Zoés 1 à Mysis 3 : Plus lumière artificielle De P1 à P4: lumière naturelle | |
Aération | Nauplii à Mysis3: faible aération (avec
diffuseurs) Mysis3 à P4: forte aération (plus bullage) |
jours | stades | MICROPARTICULES | ARTEMIA N/larve | TRAITEMENTS | SURVIES % | ||
(mg / larve / jour) | Treflan (ml/m3) | Chloramph (g/m3) | |||||
<200 mic | 120–350mic | ||||||
J0 | W/N | - | - | - | 5 | - | 89 |
J1 | N | - | - | - | 10 | - | |
J2 | Z1 | 0.015 | - | - | 18 | 2 | |
J3 | Z2 | 0.035 | - | - | 20 | - | |
J4 | Z2/Z3 | 0.080 | - | - | 40 | 3 | 92 |
J5 | Z3 | 0.060 | - | 10 | 50 | - | |
J6 | M1 | - | 0.060 | 23 | 70 | 4 | 98 |
J7 | M2 | - | 0.060 | 30 | 70 | - | |
J8 | M3 | - | 0.060 | 30 | 70 | 4 | |
J9 | P1 | - | 0.060 | 34 | 90 | - | 99 |
J10 | P2 | - | 0.100 | 38 | 90 | 5 | |
J11 | P3 | - | 0.130 | 40 | 90 | - | |
J12 | P4 | - | 0.200 | 15 | 45 | 5 | |
Moyenne | - | - | - | - | - | - | 79,8% |
Besoin total pour 4 bacs * | 184,7 | 463,9 | 4boîtes de 425g | 5, 330 1 à 1‰ | 180 | - |
* 4 bacs contenant 1100000 Nauplii
Tableau no7 : Résultats synthetique élevage larvaire P. indicus
Trois élevages (no 5, 6 et 7) ont été réalisés du 21 Novembre au 02 Décembre 1989. Seul l'élevage no6 est arrivé au stade P4.
Cet élevage, utilisant la première ponte du 21 / 11 / 1989 a été commencé en bac de ponte durant le premier jour de stade Nauplii à une densité de 760 N/litre. Le lendemain, les larves ont été transférées dans les trois bacs larvaires de 2 m3 à une densité moyenne de 120 N/litre.
Les conditions biotechniques sont les mêmes que celles des autres élevages (tableau no).
Cet élevage no5 a été nourri au stade Zoé 1 avec des Chaetoceros sp (concentration en salle d'algue pour volume de 200 litres = 2,1 à 3,6*106 cellules par ml) et des microparticules PRECAL < 120 microns.
Dès le stade Zoé 1, il y a un retard de mue pour le passage Zoé 2. Ce stade Zoé 2 va durer 4 jours de J4 à J8 au lieu de 36 heures. Puis ce stade Zoé 3 présente le même retard si bien que le passage Mysis s'effectue à J11. Cet élevage est alors jeté car la mortalité et les retards de mue sont devenus trop importants.
Les problèmes de cet élevage peuvent venir de:
Stockage des nauplii à forte densité pendant 24 heures dans de mauvaises conditions.
Utilisation d'algues d'apparence correcte mais avec éventuellement un effet inhibiteur pour la mue.
Nombreux passages de visiteurs dans l'écloserie.
Température | Salinité | Nauplii par bac |
29 | 35, 5 | 250000 |
Changement d'eau avec filtres de 250 et 500 microns | Nauplii: CT 1500 l | |
Zoés 1 : 2500 l | ||
Zoés 2 : CP 50% du volume | ||
Zoés 3 à M1 : CP 100% | ||
Lumière | Nauplii: lumière naturelle De Zoés 1 à Zoe 2 : Plus lumière artificielle De Z2 à M1: lumière naturelle | |
Aération | Nauplii à Zoe 3: faible aération (avec
diffuseurs) Zoe 3 à M1: forte aération (plus bullage) |
jours | stades | ALGUES Chaetoceros * | MICROPARTICULES | ARTEMIA N/larve | TRAITEMENTS | SURVIES % | ||
(mg / larve / jour) | Treflan (ml/m3) | Chloramph (g/m3) | ||||||
<200 mic | 120–350mic | |||||||
J0 | W/N | - | - | - | - | - | - | 88 |
J1 | N | - | - | - | - | 10 | - | |
J2 | N/Z1 | 104 | 0,015 | - | - | 18 | 1, 5 | |
J3 | Z1 | 2, 5. 104 | 0,015 | - | - | 15 | - | 68 |
J4 | Z1/Z2 | - | 0,025 | - | - | 20 | 3 | |
J5 | Z2 | - | 0,035 | - | - | 23 | - | |
J6 | Z2 | - | 0,050 | - | - | 30 | 6 | |
J7 | Z2 | - | 0,050 | - | - | 40 | - | |
J8 | Z2/Z3 | - | 0,080 | - | - | 40 | ||
J9 | Z3 | - | 0,050 | - | 10 | 60 | 4 | |
J10 | Z3 | - | 0,050 | 0,050 | 5 | 60 | - | |
J11 | Z3/M1 | - | 0,050 | 0,050 | 5 | 40 | 5 | |
moyenne | - | - | - | - | - | - | 60 | |
Besoin total pour 3 bacs** | 19 l à 3*106 | 196,3 g | 30, 8 g | 100g de cystes | 1,4521 à 1‰ | 100 g | - |
* Concentration en cellules par ml en bacs d'élevage larvaire
** 3 bacs contenant 76000 Nauplii
Tableau no8: Résultats synthetique d'élevage larvaire no5 P. moodon
L'élevage no6 est issu d'une ponte d'une femelle de 190 g avec un bon taux d'éclosion (80%) le 28 / 11 / 1989. Des mesures plus strictes ont été prises pour que l'élevage se déroule dans de meilleures conditions.
a- Conditions biotechniques
Elles sont les mêmes que pour les autres élevages avec un nombre de 300000 nauplii par bac (2 bacs d'élevage larvaires de 2 m3). La température augmente à 30°C malgré l'ouverture des fenêtres de la salle d'élevage larvaire.
b- Alimentation
Quatre types d'aliments ont été utilisés:
c- Survie
Au quinzième jour d'élevage, nous avons des post-larves de 4 jours. Les 600000 Nauplii donnent 540000 P4 avec une survie de 90%. Les P4 sont en bonne santé mais semblent être plus petites par rapport aux P4 indicus.
Température | Salinité | Nauplii par bac |
29°6 | 35‰ | 300000 |
Changement d'eau avec filtres de 250 et 500 microns | Nauplii: CT 1500 l | |
Zoés 1: 2000 l | ||
Zoés 2: CP 50% du volume | ||
Zoés 3 à P4 : CP 100% | ||
Lumière | lumière naturelle durant l'élevage | |
Aération | Nauplii à Zoe 3 : faible aération (avec
diffuseurs) Mysis1 à P4: forte aération (plus bullage) |
jours | stades | MICROPARTICULES | ARTEMIA N/larve | TRAITEMENTS | SURVIES % | ||
(mg / larve / jour) | Treflan (ml/m3) | Chloramph (g/m3) | |||||
<200 mic | 120–350mic | ||||||
J0 | W/N | - | - | - | 5 | - | 99 |
J1 | N | 0,015 | - | - | 10 | - | |
J2 | N/Z1 | 0.015 | - | - | 18 | - | |
J3 | Z1 | 0.020 | - | - | 20 | 1, 5 | |
J4 | Z2 | 0.035 | - | - | 40 | - | 93 |
J5 | Z2/Z3 | 0.050 | 0,080* | 5 | 40 | 3 | |
J6 | Z3 | - | 0,080* | 10 | 60 | - | |
J7 | Z3/M1 | - | 0,100* | 5 | 60 | 4 | |
J8 | M1 | - | 0,100 | 17 | 70 | - | 98 |
J9 | M2 | - | 0,120 | 20 | 70 | 4 | |
J10 | M2/M3 | - | 0,150 | 30 | 90 | - | |
J11 | M3 | - | 0,180 | 45 | 90 | 5 | |
J12 | P1 | - | 0,200 | 38 | 90 | - | 98 |
J13 | P2 | - | 0,200 | 41 | 90 | 5 | |
J14 | P3 | - | 0,200 | 42 | 90 | - | |
J15 | P4 | - | 0,200 | 23 | 50 | 5 | |
Moyenne | - | 89,9 | |||||
Besoin total pour 2 bacs** | 62, 6 g | 945, 6 g | 2, 5Btes de 425g | 3, 546 1 à 1‰ | 110 g | - |
* Microparticules 120 / 350 tamisés sur filtre de 100 microns.
** 2 bacs contenant 600000 Nauplii
Tableau no9: Résultats synthethiques d'élevage no6 P. monodon
Conclusion: Réalisé avec plus de soin et en respectant mieux certaines règles de préventions sanitaires, cet élevage s'est passé sans incident.
A la différence des P. indicus qui passent post-larves à J9, les P. monodon sont plus lentes puisqu' elles passent post-larves à J12 malgré une température plus élevée. Ceci avait déjà été observé lors du premier cycle.
Cet élevage a été réalisé avec deux objectifs.
Les conditions biotechniques ne changent pas. L'élevage est issu d'une femelle de 183 g ayant pondu 1500000 oeufs le 2 / 12 / 1989, à 70% de fécondité: 900000 nauplii ont été récoltés et 600000 seulement sont retenus et transférés dans les deux bacs larvaires no1 et 2 (300000N/bac).
Au cours de l'élevage, une forte mortalité a été constatée dès les premiers jours dans le bac no2, il ne reste que 41% du nombre initial. Cet élevage est jeté pour éviter tout risque de contamination.
Le bac no1 continue jusqu' à J11 où les larves ont atteint le stade M3. Elles étaient bien formées jusqu' au stade Z2. puis, des difficultés à la mue sont apparues.
Observation dans un bêcher : larves inactives restant au fond du récipient.
Observation à la loupe binoculaire: Larves tordues et fripées qui n'arrivent pas à se débarrasser de leur mue mais se nourrissent bien.
Aucune maladie provoquant de forte mortalité n'apparaît.
La faiblesse des larves serait due à la qualité des microparticules et à l'absence d'artemia à partir du stade Z3.
Conclusion: l'élevage à alimentation unique (ACAL 120/350 tamisé) peut marcher mais seulement jusqu'au stade Z2 où il est indispensable d'utiliser des artemia pour assurer un passage de mue correct et une bonne survie.
Température | Salinité | Nauplii par bac |
29°5 | 35‰ | 300000 |
Changement d'eau avec filtres de 250 et 500 microns | Nauplii: CT 1500 l | |
Zoés 1: 1700 l | ||
Zoés 2: CP 50% du volume | ||
Zoés 3 à Mysis 3 : CP 100% | ||
Lumière | Nauplii: lumière naturelle durant l'élevage | |
Aération | Nauplii à Mysis1: faible aération (avec
diffuseurs) Mysis 1 à Mysis 3: Forte aération (plus bullage) |
jours | stades | MICROPARTICULES | ARTEMIA N/larve | TRAITEMENTS | SURVIES % | ||
(mg / larve / jour) | Treflan (ml/m3) | Furazolidon (g/m3) | |||||
<120 mic | 120–350mic | ||||||
J0 | W/N | - | - | - | 5 | - | 86 |
J1 | N | - | - | - | 10 | - | |
J2 | N/Z1 | 0, 015 * | - | - | 18 | 0, 15 | |
J3 | Z1 | 0, 020 * | - | - | 15 | - | 88 |
J4 | Z1/Z2 | 0, 035 * | - | - | 20 | 0, 30 | |
J5 | Z2 | 0, 035 * | - | - | 20 | - | |
J6 | Z2/Z3 | 0, 050 * | - | - | 25 | 0, 30 | |
J7 | Z3 | 0, 070 * | - | - | 40 | - | |
J8 | Z3/M1 | 0, 070 * | 0, 070 | - | 60 | 0, 40 | |
J9 | M1 | - | 0, 080 | - | 60 | - | 82 |
J10 | M2 | - | 0, 100 | - | 70 | 0, 45 | |
J11 | M2/M3 | - | 0,100 | - | 40 | - | |
Moyenne | - | 63 | |||||
Besoin total pour 1 bac ** | 63, 9 g# | 79, 6 g | - | 0, 753 1 à 1‰ | 3, 2 | - |
* Microparticules 120/350 microns tamisés sur filtre de 100 microns.
** 2 bacs contenant 600000 Nauplii
# soit 213 g de microparticules 120/350 microns
Tableau no10: résultats synthetiques d'élevage larvaire P. monodon du 02 au 11 Décembre 1989
Consommation totale en élevage larvaire pour produire 870000 P4 indicus et 540000 P4 monodon.
Pour une production arrondie à 1 million de Post-larves:
N.B: Les artemia utilisés pour cette production sont toujours des SAN-FRANCISCO BAY BRAND mais le taux d'éclosion, qui était de 70% en 24 heures pour le premier cycle, est passé à moins de 50% en 36 heures. Ce qui signifie que la qualité des artemia distribués n'était pas optimum (ce n'est plus des Ao fraîchement éclos) et ceci explique la consommation plus importante que prévue: 2500 g pour 1, 4 million Post-larves.
La phase de prégrossissement en NURSERY a duré 14 jours ( P4 à P18) pour P. indicus qui seront ensemencés dans les bassins 2, 3 et 5, et 24 jours (P4 à P27) pour l'ensemencement du bassin 6.
Pour les P. monodon l'élevage dure 15 jours ( P4 à P19) les post-larves sont ensemencés dans les bassins 1, 4, 5, 6, et bassin à marée.
Trois types d'aliments ont été utilisés:
- Artemia fraîchement éclos | : A0 |
- Artemia de 2 jours | : A2 |
- Artemia adulte |
les crevettes broyés
La fréquence de distribution a été changée par rapport au premier élevage. Six repas sont donnés (4, 8, 12, 16, 20 et 24 heures) au lieu de 4. Les Artemia sont distribués à 10 et 17 heures.
La quantité distribuée est fixée à l'avance sous forme de tableau. Cependant elle varie en fonction du résultat du contrôle quotidien des restes et de l'observation de l'état des crevettes.
Les paramètres au cours de l'élevage sont les suivants:
P. indicus | P. monodon | |
Température | ||
minimale | 26,2 | 27,2 |
moyenne | 27,5 | 29,5 |
maximale | 28,7 | 31,8 |
Salinité | 36 | 35,5 |
Renouvellement d'eau(%) | 50 à partir de P3 | 50 à partir de P3 |
Tableau no11: paramètres biotechniques
Stade | Artemia (nombre / larve) | Microparticules (mg / larve) | Quantité total (g) | |||
A0 | A2 | ACAL | Président | ACAL | Président | |
P4 | 38 | 0,13 | 111 | |||
P5 | 39 | 0,25 | 222 | |||
P6 | 40 | 0,27 | 237 | |||
P7 | 48 | 0,28 | 250 | |||
P8 | 78 | 9 | 0,31 | 272 | ||
P9 | 26 | 14 | 0,36 | 330 | ||
P10 | 71 | 15 | 0,39 | 348 | ||
P11 | 39 | 18 | 0,41 | 360 | ||
P12 | 36 | 17 | 0,42 | 370 | ||
P13 | 19 | 20 | 0,44 | 0,05 | 384 | 40 |
P14 | 5 | 20 | 0,48 | 0,08 | 420 | 75 |
P15 | 17 | 20 | 0,51 | 0,34 | 444 | 300 |
P16 | 9 | 23 | 0,55 | 0,34 | 480 | 300 |
P17 | 11 | 0,34 | 0,16 | 296 | 140 | |
4524 | 855 |
Tableau no12 : BILAN ALIMENTATION P. indicus
Stade | Artemia (nombre / larve) | Microparticules (mg / larve) | Quantité total (g) | |||
A0 | A2 | ACAL | Président | ACAL | Président | |
P4 | 20 | 0,10 | 54 | |||
P5 | 42,5 | 0,22 | 120 | |||
P6 | 37 | 0,24 | 132 | |||
P7 | 15 | 11 | 0,27 | 150 | ||
P8 | 24 | 0,31 | 168 | |||
P9 | 23 | 0,33 | 180 | |||
P10 | 20 | 0,37 | 204 | |||
P11 | 19 | 0,44 | 240 | |||
P12 | 19 | 0,53 | 290 | |||
P13 | 500 g | 19 | 0,69 | 375 | ||
P14 | 19 | 0,61 | 0,11 | 330 | 60 | |
P15 | 19 | 0,61 | 0,11 | 330 | 60 | |
P16 | 10 | 0,41 | 0,11 | 385 | 60 | |
P17 | 0,45 | 0,09 | 246 | 50 | ||
P18 | 0,74 | 0,15 | 236 | 50 | ||
P19 | 0,17 | 0,04 | 44 | 10 | ||
P20 | ||||||
3484 | 290 |
Tableau no13: BILAN ALIMENTATION P. monodon
4311- Résultat statistique
Les résultats statistiques de l'élevage sont les suivants:
Stade | Entrée en nursery | Sortie | Survie | Poids moyen |
P4 | 878000 | |||
P17 | 324000 | 16 mg | ||
P18 | 423635 | 17,3 mg | ||
TOTAL | 747635 | 85 % |
Tableau no 14: Résultats d'élevage nursery P. indicus
40000 P18 ont été de nouveau remises dans le bac nursery pour ensemencer le bassin 6. De P18 à P27 la survie a été de 100 %. Leur poids moyen à la sortie est de 57,1 mg.
4312- Test de salinité
Un test de salinité a été fait avec les post-larves pour voir leur qualité à la sortie de la nursery, la résistance des animaux à un choc de salinité (35, 25, 20, 15 et 10‰) permet de déterminer les conditions physiologiques des crevettes. La survie ayant été de 100% 2 heures après, on constate que les post-larves sont très résistantes donc aptes à être ensemencer.
4313- Ensemencement:
L'ensemencement des bassins 2, 3 et 5 a été fait le 5/12/89. La différence de température entre le bac nursery et les bassins varie de 0,5 à 1°C, il n'a pas été nécessaire de pratiquer une acclimatation.
Toutefois l'ensemencement du bassin no6 avec 20000 P27 et une difference de 2°C (29 en nursery et 31°C en bassin) a donné une mortalité de 90% quasi-immédiate. A la suite de cette expérience malheureuse, des acclimatations seront mises en place pour P. monodon.
4321- Résultats statistiques
Le tableau suivant montre l'effectif à l'entrée et à la sortie de la nursery:
Stade | Entrée en NURSERY | Sortie | Survie | Poids moyen |
P4 | 540000 | |||
P17 | 222000 | 7,4 mg | ||
P18 | 62000 | 9,8 mg | ||
P19 | 178000 | 11,1 mg | ||
TOTAL | 462847 | 86 % |
Tableau no 15: Résultat d'élevage nursery P. monodon
4322- Test de salinité
Les crevettes ont bien résisté aux chocs de salinité. Malgré l'observation d'une mortalité de 10% dans les séries des 10‰, les post-larves sont considérées en bonnes conditions.
4223- Ensemencement
L'ensemencement des bassins 4 et 6 a été effectué le 26/12/89, celui des bassins 1, 5 et bassin à marée a été fait le 27/12/89.
4324- Acclimatation des post-larves
Au terme de l'élevage des P. monodon en nursery, et lors des transferts des post-larves, la différence de température varie de 2 à 3°C en plus dans les bassins. Des acclimatations s'avèrent alors nécessaires avant l'ensemencement. Le matériel utilisé est le suivant:
L'acclimatation dure en moyenne 1 h 30 à 2 h. La montée en température s'effectue de 0, 5°C en 30 mn.
La quantité totale d'aliment utilisé durant l'élevage en nursery est résumée par le tableau suivant:
ESPECES | MICROPARTICULES | ARTEMIA | |||
ACAL (g) | PRESIDENT | A0(n*106) | A2(n*106) | Adulte | |
indicus | 4524 | 855 | 414 | 147 | 0 kg |
monodon | 3484 | 290 | 62 | 89 | 2,6 |
Total | 8008 | 1145 | 476 | 236 | 2,6 |
4,5 kg* Président | 13 boîtes de 425 g |
* La farine de “Président” constitute ¼ du poids des granulés broyés.
Tableau no16: Bilan alimentation Nursery
L'artemia a constitué la base de l'aliment de P. indicus, tant en Ao qu'en A2. Par manque d'artemia pour l'élevage des P. monodon l'alimentation séche représente une part plus importante que pour les P. indicus. Au même stade (P17) le poids moyen des P. indicus est deux fois supérieur à celui des P. monodon (16 mg contre 7,4 mg).
L'utilisation des crevettes broyées comme aliment contribue à la diminution du cannibalisme.
- Comparaison des résultats d'élevage
La comparaison avec les résultas du premier élevage, donne le tableau suivant:
ESPECES | P. indicus | P. monodon | ||
ELEVAGE | I | II | I | II |
Temp. (°C) | 24, 5 | 27, 5 | 25 | 29,5 |
Survie (%) | 77 | 85 | 75 | 86 |
P. moy. (mg) | 7 | 16 | 6,5 | 11,1 |
Tableau no17: Résultat des deux cycles d'élevages.
On observe principalement un gain de croissance dû à une température supérieure de 3 à 4°C. La survie est également en progression, résultat d'une alimentation bien fractionnée. Le manque d'artemia pour P. monodon n' a pas entraîné de perte et a été l'occasion de pratiquer un élevage avec plus d'alimentation sèche.
CONCLUSION
Les résultats obtenus lors de ces élevages sont satisfaisants tant au niveau de la survie que du poids moyen.
Trois souches rapportées de l' IFREMER BREST en Octobre et Novembre 89, sont utilisées pour la nourriture des larves de Pénéides:
Un mois avant la date de ponte, l'unité algues doit démarrer sa production pour arriver aux volume de 200 litres dès l'apparition des premiers Zoé 1 en élevage larvaire.
Le milieu de culture est le même que celui utilisé pour le cycle d'élevage no1 (rapport d'élevage no1) sauf pour les solutions no4 et no5. Pour la solution no4, on a utilisé 40 g de Na2SiO3 par litre d'eau distillée au lieu de 400 g par litre et pour la no5 150 g de KNO3 par litre au lieu de 300 g. Pour la culture de Chaetoceros, la salinité de l'eau de mer est descendue à 28‰.
Chaque souche d'algue est cultivée suivant le diagramme:
Le nombre de cellules d'algue à chaque fin de stade est donné dans le tableau suivant:
Volume de culture | Age | Nombre de céllules /ml * 106 | ||
jours | Platymonas sp | Chaetoceros sp | Isochrysis sp | |
Tubes à essais | 7 | 2,25 | 6,8 | 3,5 |
250 ml | 7 | 0,70 | 2,5 | - |
3 litres | 3 | - | 2,25 | 3 |
5 | 0,8 | 7,3 | 7,5 | |
7 | 3,7 | 7,2 | - | |
25 litres | 5 | 0,4 | 3,7 | 2 |
100 litres | 3 | 0,2 | - | - |
200 litres | 3 | 1,7 | 2,6 | 2,4 |
1000 litres | 2 | - | 2,6 | - |
3 | - | 3,3 | - |
Ce sont des valeurs moyennes obtenues au cours des trois mois de culture.
55- DISCUSSIONS
Les densités alguales obtenues sont satisfaisantes dans l'ensemble. cependant on note des concentrations trop faibles pour le Platymonas sp. Cette espèce se dépose plus vite que les autres surtout dans les bacs de 25 l où les cellules sont retenues par les aspérités dans le fibre de verre empéchant par la même leur bon développement.
Deux cas de présence de ciliées sont apparus au cours de cette production: l'un survient en bac de 25 l et l'autre en 200 1. Ceci est certainement dû aux manipulations car l'eau de mer est stérilisée à l'U. V
56- ENTRETIEN DES SOUCHES
La purification des souches est faite sur gélose, à raison de 9 g par litre d'eau de mer enrichie avec la solution no1. Les repiquages des souches purifiées se font sans problème pour Platymonas et chaetoceros. Mais pour Isochrysis dont le développement a lieu à l'intérieur de gélose, le repicage reste toujours problèmatique.
57- UTILISATION EN ELEVAGE LARVAIRE
Lors de cette production, les algues obtenues ne sont utilisées qu'une seule fois en élevage larvaire et il semble que cette utilisation ait entraîné quelques problèmes pour le passage des stades larvaires (élevage no5). Il semble donc que l'utilisation des aliments de type microparticules permet de maintenir facilement la qualité du milieu d'élevage et élimine ainsi les risques de contamination.
CONCLUSION
La technique de production d'algue commence à être mieux maîtrisée. Les concentrations obtenues ont été satisfaisantes sauf pour les Platymonas. Les améliorations porteront sur: