壳坚硬，两壳形式和大小相同；不等边喙在前半部；外形近椭圆形。系带嵌入，不隐蔽，厚的椭圆弓体延伸到近后缘一半处。心形半月形延长，不特别明显，具浅色和暗褐色细小放射脊。孔罩减少为系带后区线。表面浅线与壳线平行。生长期明显。套膜窦相对深，但不延伸超过壳心；在下足与套膜线之间有楔形空间。缘平滑。暗色带灰色到奶白色。虹吸管沿整体附带；这个特征区别于槽蛤仔。

 

蛤仔	捕捞蛤仔

捕捞蛤仔主要发生在西班牙、意大利、葡萄牙和法国。在西班牙，从16世纪开始的早期捕捞和消费的软体动物主要是牡蛎，只有不多的蛤，但报告提到了在葡萄牙和其他地区销售蛤的情况。对蛤的强度捕捞开始于1926和1927年。渔民使用禁用工具，到处乱挖，捕获所有规格的蛤。

尽管捕捞量大，但蛤的繁殖快速。根据1948年的预计，布尔戈河口（西班牙）槽蛤仔和蛤仔种群可在1年内从密度1-5蛤/平方米恢复到30-50蛤/平方米。1956年，加利西亚蛤产量约为全国产量的百分之60。那时，在比戈河口靠近圣西蒙处有250艘船捕捞双壳类，每艘船每天捕捞10-12千克蛤仔（共2 500千克），捕捞季节从10月到3月，在最靠近河口的区域有大约60艘船作业，每天捕捞3 000千克。在比戈河口里，由于强降雨使盐度急剧下降，死亡率高，导致各地产量不同。在好的年份，蛤产量也有变化，总产量统计数据很少。但对自然种群稳定的捕捞导致自然种群下降，捕捞种类中包括菱形蛤仔，并寻找新的捕捞区。从1985到1986年，捕捞和养殖蛤仔和菱形蛤仔的产量约1 700 吨。

蛤仔捕捞主要发生在西班牙、葡萄牙、法国和意大利。在西班牙和葡萄牙，捕蛤渔业主要目标是3个种类：槽蛤仔，当地称为“almeja fina”；蛤仔，称为“almeja babosa”；和当地称为“almeja rubia”的菱形蛤仔。1990年在加利西亚自然海床捕捞的总产量预计为2 000吨。其他生产区为西班牙南部的卡蒂斯和维尔瓦。

蛤仔穴居在沙和淤泥中，为瓣鳃双壳软体动物，通过两个虹吸管（一个在内，另一个在外）过滤水捕获有机物（碎屑）和浮游植物作为食物。鳃为两瓣，由鳃丝组成。其生活在河口（流域）的沙质滩涂上。蛤仔通常隐藏在从低潮线到40米水深的沙、砂砾或泥底。雌雄异体，尽管也很少有雌雄同体情况。繁殖在体外进行，在野外和/或孵化场主要发生在夏季。春季，可通过人工调节增高温度和提供充足食物来孵化繁殖。在长到约0.5毫米附着在沙和淤泥底层之前，幼体自由游动10-15天。

养殖者从自己的区域（保护的底层）或春季自然蛤种群获得苗。用小铁铲挖沙，过筛获得苗，将苗转移到养成区，撒播，比例约为800个蛤/平方米。也可在港口区挖成蛤，撒播在自己的区域。养殖者要定期清理养殖区的掠食者和淤泥。
 
也可从孵化场获得苗，不超过40毫米的亲本在20 °C时保养30-40天。亲体以单胞藻为食，直到排出配偶子。可以通过将温度从10提高到26 °C刺激配偶子排出，在此温度下停留30分钟，然后将温度减少到15 °C几分钟；反复将温度提高到26 °C，再降低直到排出配偶子。加入槽蛤仔的精子也有助于配偶子排出。在小容器中受精，单独放置每个个体。用40µm网目的网过滤卵，运送到10升的水箱，48小时后出现面盘幼虫。用40µm网目的网收集幼体，按3 000个幼体/升的密度培育。第一周幼体每天投喂单胞藻，然后隔天投喂，直到变形。
 
可在温室中培育，采用单胞藻控制摄食，或在养殖台上有孔的容器中培育。其他的办法是在陆基水箱抽取环境方面有控制的水，将蛤放在直径约50厘米、20厘米长、底层用硬质网做成的圆桶中。
 
养殖技术简单，包括放养幼蛤、定期维护底层、避免藻类、海星和其他掠食者；使用小铁铲和耙清除海藻，使底层有氧、保持蛤的密度。成蛤养殖要求在水下进行；挖洞穴减少壳畸形。在撒播后1小时，多数蛤钻入底层。也可将蛤放在海床上，除定期清理或加一些设备外（例如减少敌害影响的网，但增加维护成本），没有任何控制措施。总体上，养殖技术简单。
 
在加利西亚，渔民在潮间带步行用特别的手铲捕捞，或有时用养殖区一般用来清除海草的耙。也可从船上捕捞，船的大小从不到1吨到12吨不等。用浆推进，其他则使用舷外发动机。使用不同的收集工具，包括“'rastro”和耙，在船上用长把手操作。禁渔季节从3月到10月。允许捕捞的蛤仔最小规格为25毫米。加利西亚一些区域有保护底层，称为“公园”，进行蛤的粗养。手工（步行）捕捞使用不同类型的小铁铲；有时使用养殖区一般用来清除海草的耙。
 
渔民将蛤放在净化站，在水箱中停留至少42小时。然后包装在0.5、1和2千克的网袋中，用于做罐头或鲜食。用冷藏车运输，将温度保持在3-10 °C；此类蛤的货架期为5天。
 
生产成本一般受社会-经济环境和苗种供应规模的很大影响。育苗开始于春季，在第二年秋末或早冬捕捞。总成本中重要的因素是海底租金或建立孵化场和育苗设施的费用，以及管理、捕捞工具和劳力费。
 

疾病	致病因子	类型	综合病症	措施
帕金虫病；蛤帕金虫病	奥氏帕金虫；大西洋帕金虫	原生动物寄生	严重感染的蛤鳃、足、消化腺、肾、性腺和外套膜上可见白色包囊或结节；可导致大量死亡	不引入感染区的蛤；减少密度
蛤仔二十面体病毒病	二十面体状病毒生物	病毒	对寄主的影响无具体论述，但死亡率高	不了解
褐环病	弧菌	细菌	细菌附着在壳的外套缘骨膜片表面，内表面附着逐渐增多的分泌导致的褐色有机物（贝壳硬蛋白）；影响钙化；妨碍生长	不引入感染区的蛤；减少密度
纤毛虫感染	车轮虫	车轮虫属纤毛虫	多数感染无害；在靠近套膜、沿虹吸管或鳃上附着或寄生的纤毛虫感染强度不大	不了解预防和控制措施
涡虫感染	涡虫	扁形虫寄生	不了解对寄主的影响；自由穿过 套膜腔和食管；常见于鳃表面；很少见于肾内腔；可能介于体内共生和寄生之间	难以预防和控制
吸虫感染	未确定的尾蚴和后囊蚴	吸虫	一般无害	难以预防和控制

与蛤仔一道养殖的竞争种类是菱形蛤仔、黄蛤仔、槽蛤仔、镜蛤和樱蛤。主要敌害为岸蟹；海星（海盘车和多刺海星）；玉螺和小鸥。一个岸蟹（宽6.5厘米）可每天消耗5-6个蛤。在一些养殖区域使用网控制敌害。

供病理学专业知识的单位

以下是几个可以提供专业技术知识的单位:

Antonio Figueras博士
Instituto Investigaciones Marinas, CSIC
西班牙软体动物疾病国家参考实验室
Eduardo Cabello 6 - 36208 VIGO - 西班牙
电话： +34 986 21 44 62 - 传真： +34 986 292 762
([email protected])

Dr. Isabelle Arzul博士
IFREMER, Laboratoire de Génétique et Pathologie
BP 133 - 17390 La Tremblade - 法国
电话： +33 5 46 36 98 43 传真： +33 5 46 36 37 51  
([email protected])

E.M. Burreson博士
威廉和玛丽学院
维吉尼亚海洋科学所
研究和咨询服务主任
P.O. Box 1346 Gloucester Point - VA 23062
美国
电话: +1 804 684 7015- 传真: +1 804 684 7097
([email protected])

S. Bower博士
渔业和海洋部太平洋生物站
3190 Hammond Bay Road - Nanaimo - British Columbia V9R 5K6
加拿大
电话： +1 250 756 7077 - 传真： +1 250 756 7053
([email protected])

Jorge Cáceras Martínez博士
Instituto de Sanidad Acuícola, A.C. - Calle 9 y Gastelum # 468,13,14. CP. 22800 - Ensenada Baja California
墨西哥
电话： +52 646 1783473 - 传真： +52 646 1783473
([email protected])

在加利西亚捕捞的所有蛤仔（槽蛤仔、蛤仔和菱形蛤仔）价值高，蛤仔被认为是传统食品。蛤仔的质量与其他蛤类类似，但货架期极短。这是因为栖息在更深底层，低潮时缺乏在空气中暴露。因此，由于保存时间短，市场价格一般低于其他蛤类。价格随市场供应量变化。2005年，西班牙活蛤仔价格约为10欧元/千克。

加利西亚（西班牙）贝类渔业的历史显示，对软体动物的管理不正确，一些物种衰退。首先衰退的是食用牡蛎；此后开始挖鸟蛤和蛤，由于槽蛤仔已很稀少，于是开始挖蛤仔。目前，其他商业双壳类种群正在下降。除了捕捞强度大外，导致蛤资源衰退的还有污染增加、港口和城市扩大减少了生境。

加利西亚软体动物生产的未来需要综合规划，包括下列方面：

• 了解捕捞者和市场结构，提高其责任和增加利润。
• 建立保护区，恢复和增加自然种群。
• 建立综合规划，处理城市和工业废水。
• 建立关于蛤类种群动态和生物学研究的长期项目，特别是改善遗传。
• 进行双壳类软体动物保护和消费的推广。
• 创建双壳类软体动物病理学的特别研究计划。

对其他物种没有消极影响，但需要遵循负责任水产养殖（见上文的主要问题）。

Abella, E., Martinez, M., Sebe, M., Alcalde, A., Mosquera, P. & Parada, J. 2001. Experiments on the culture of the clam (Venerupis pullastra): Nursery and growth in Ria de Arousa, Galicia, Spain. In: H.F. Barber & M.I. Lopez.(eds.), Actas del VII Congreso Nacional de Acuicultura, pp. 118-122. Dirección General de Universidades e Investigacion Consejeria de Educación Cultura y Deportes Gobierno de Canarias: Instituto Canario de Ciencias Marinas (CCM), Spain.

Arnaiz, R. & De Coo, A. 1977. Artes de marisqueo usadas en la ria de Arosa. Plan de Explotacion Marisquera de Galicia. Santiago, Galicia, Espana. 102 pp.

Cáceres-Martínez, J. & Figueras, A. 1997. The mussel, oyster, cockle, clam and pectinid fisheries in Spain. NOAA Technical Report NMFS 129:165-190. NOAA/NMFS, Washington DC., USA.

Ferreira, E. P. 1988. Galicia en el comercio maritimo medieval. Fundacion 'Pedro Barrie de la Maza'. Coleccion de Documentos Historicos. 903 pp.

Figueras, A. 1956. Moluscos de las playas de la ria de Vigo. I. Ecologia y distribucion. Investigacion Pesquera, 5:51-88.

Figueras, A. 1957. Moluscos de las playas de la ria de Vigo. II. crecimiento y reproduccion. Investigacion Pesquera, 7:49-97.

Figueras, A., Robledo, J.A. & Novoa, B. 1992. Occurrence of Haplosporidian and Perkinsus-like infections in carpet-shell clams, Ruditapes decussatus (Linnaeus, 1758), of the Ría de Vigo (Galicia, NW Spain). Journal of Shellfish Research, 11(2):377-384.

Figueras, A., Robledo, J.A.F. & Novoa, B. 1996. The brown ring disease in clams (Ruditapes decussatus and R. philippinarum) from Spain and Portugal. Relation with parasitism. Journal of Shellfish Research, 15(12):1-6.

Navaz y Sanz, J.M.1942. Estudio de los yacimientos de moluscos comestibles de la ria de Vigo. Instituto Espanol de Oceanografia, 16:74.

Novoa, B. & Figueras, A. 2000. Viral like particles associated to mortalities of carpet shell clam (Ruditapes decussatus). Diseases of Aquatic Organisms, 39(29):147-149.

Novoa, B., Luque, A. Borrego, J.J. & Figueras, A. 1998. Characterization and infectivity of four bacterial strains isolated from brown ring disease affected clams. Journal of Invertebrate Pathology, 71:34-41.

Novoa, B., Ordás, C. & Figueras, A. 2002. Hypnospores detected by RFTM in clam (Ruditapes decussatus) tissues belong to two different organisms, Perkinsus atlanticus and a Perkinsus-like organisms. Aquaculture, 209:11-18.

Ordás, M.C. & Figueras, A. 2001. Histopathology of the infection by Perkinsus atlanticus in three clam species (Ruditapes decussatus, R. philippinarum and R. pullastra) from Galicia (NW Spain). Journal of Shellfish Research, 20(3):1019-1024.

Ordás, M.C., Ordás A., Beloso, C. & Figueras, A. 2000. Immune parameters in carpet shell clams naturally infected with Perkinsus atlanticus. Fish and Shellfish Immunology, 10(7):597-609.

Vilela, H. 1950. Vida bentonica de Tapes decussatus (L.). Travaux de la Station de Biologie Maritime de Lisbonne, 53:1-114.