La asesoría del departamento de larvicultura no se realizó por las razones presentadas al inicio de este informe, sobre todo por falta de materia prima, naupliis (véase informe de la misión maduración).
Por no haber visitado otro centro de producción, no fue tampoco posible conocer en los hechos el protocolo de trabajo utilizado en el país, ni ver los problemas que podrían encontrarse en la producción de larvas (¿ No hay ningfún problema ?).
En una conferencia se presentó el método de trabajo de cría en agua clara en alta densidad procedente de las investigaciones de Aquacop y desarrollado por la Sociedad France-Aquaculture (Véase sumario de la conferencia en anexo). Esta técnica se aplica netamente en la mayoria de los centros de desove en el Ecuador para la cría de P. vannamei. También se presentaron las enfermedades susceptibles de aparecer en larvicultura, asi como los tratamientos preconizados.
Según lo que se reporta respecto a la cría de Schmitti, las larvas de esta especie son más resistentes que las de P. vannamei y pueden criarse de manera un poco más rústica.
Por ejemplo, en la costa caribeña de Colombia, existen varios laboratorios trabajando las dos especies, cuando éstos tienen una sobrevivencia de 70 % para Schmitti, no pasa de 30–40% para P. vannamei; eso con implementos de trabajo relativamente artesanales.
La mortandad de P. vannamei se debe a una menor resistencia de la especie al “stress” (calidad del agua, alimentación, etc.) y se desarrollan mayormente en forma de enfermedades infecciosas; por eso las técnicas utilizadas para P. vannamei dan un papel muy importante tanto a la gestión sanitaria y a la profilaxia, como a la calidad del agua y de la alimentación.
Entre esta técnica y la utilizada en Cuba, la diferencia existe más a nivel de la exigencia en cuanto a la gestión sanitaria y a la precisión del trabajo que en el propio método de cría, eso debido a la mayor resitencia de Schmitti.
Pero el hecho de que no hubo problemas graves de patología hasta ahora en Cuba, no significa que no puede haberlos, por eso hay que relativizar esta resistencia de Schmitti tomando en cuenta que:
Los problemas patológicos infecciosos aparecen en un laboratorio después de un tiempo de producción, 6 meses - 1 año.
Cuando se presenta un problema de enfermedad infecciosa en una cría, la mortandad puede afectar a toda la cría, representando pérdidas económicas importantes.
Se trata de un centro de desove de tipo industrial (por oposición a artesanal), y se supone que tiene que producir de esta forma, es decir con rendimientos y seguridad óptimos para que se justifique la inversión hecha.
Hay que recordar siempre la posibilidad de aparición de problemas patológicos, y prevenirlos por medio de:
Un método de trabajo preciso y riguroso, y una gestión sanitaria adecuada.
En caso que aparezca hay que tratarlos con antibióticos.
Hay variaciones de salinidades y de temperatura en el mar y, en las cisternas durante los meses más calientes se registraron temperaturas muy altas para criar larvas (31,5°C). Se presenta difícil trabajar en estos meses por los problemas que causan también estas altas temperaturas para la obtención de naupliis.
En cuanto a las variaciones de salinidad que se encuentran en el mar (hasta 4 % de 1 día para otro) son probablemente debido a la zona en la cual está ubicado el centro. Se amortiguan al mezclarse el agua que se bombea del mar al agua ya presente en los sedimentadores y cisternas (variaciones máximas registradas de un día para otro : 2 %).
Pero en las cisternas de reserva de agua pueden también haber variaciones considerables en caso de aguaceros fuertes.
El problema es la variación consecuente que va producirse en el tanque de larvas al hacerse el recambio de agua, provocando un stress en los animales. Se puede limitar el stress aumentando el tiempo de cambio de agua (igualmente disminuyendo el flujo) y haciendo el recambio con un nivel más alto.
En este caso, es muy importante al hacer un recambio, medir las temperaturas y salinidad del agua entrante para ajustar eventualmente el flujo del recambio.
Detener dos naves independientes de larvicultura presenta la ventaja de poder hacer vacíos sanitarios parciales. Pero cada una de estas áreas tiene que estar separada del área de maduración.
A la llegada se insistió bastante sobre la necesidad de independizar las dos áreas por razones de gestión sanitaria.
El área de maduración es una zona “sucia”, es decir cargada de bacterias patógenas procedentes de los progenitores, de la comida, y del agua filtrada solamente a 55 micras. Además, esta zona no se vacía sistemáticamente de manera sincronizada con la de larvicultura pero con una frecuencia mucho menor. Es importane que no se disperse esta “suciedad” de esta área hasta la larval, lo que representaría una fuente potencial de enfermedades y de pérdida de larvas.
Por consecuencia, no debe haber comunicación de maduración hacia larvicultura.
Por otra parte en el caso de utilización de antibióticos en larvicultura la comunicación en el sentido de larvicultura hacia maduración puede provocar el traslado de antibióticos y de cepas de bacterías resistentes, disminuyendo así el efecto de estos antibióticos tan necesarios para el tratamiento de las larvas.
La única forma de independizar esta dos áreas, evitando así intercambios de material y de personal es cerrar el corredor con una pared y afectar a cada departamento su propio laboratorio de trabajo, además, eso daría a cada departamento más comodidad y claridad en su trabajo de laboratorio.
La idea de los cuartos de larvicultura es de independizar un grupo de tanques para limitar las consecuencias de enfermedades infecciosas o virales, disminuyendo la probabilidad de que la enfermedad se riegue a todos los tanques, como en este caso, los cuartos están atravesados por el corredor central así como por el canal de drenaje, la independencia de estos cuartos es muy relativa.
El techo transparente provee una iluminación fuerte encima de los tanques, lo que favorece un buen crecimiento de las algas, para poder controlar la intensidad de la luz en función de este crecimiento, reducirlas netamente en caso de que las densidades suban demasiado, se instalaron tapacetes movibles de lona oscura.
El agua se encuentra disponible en cantidad suficiente en cría larval. En cuanto a su calidad, existe el problema de las posibles variaciones de los parámetros fisicos, y una reserva sobre la eficacia de la filtración (Véase capítulo 2).
Los sopladores proveen una aeración muy buena en los tanques de larvicultura.
El único problema que se presenta es la dificultad de lavar el piso debajo de éstos.
Las tuberías de agua de mar no tienen pendientes, lo que hace falta para drenar la tubería al final del día.
Hay una doble red de aclimatación de agua : 8 micras y 25 micras, la de 25 micras está destinada al suministro de agua para las postlarvas con el objetivo de prepararlas a las condiciones de agua de la precría. La calidad de esta agua probablemente no afecta a las larvas, pero baja la calidad sanitaria de todo el departamento.
Se aconseja la fabricación de cascos colectores tipo aquacop (para larvas y naupliis de artemias) que facilitan mucho los trabajos de pesca y evitan cualquier pérdida de las larvas en ocasión de los recambios de agua (véase conferencia).
Según lo que se conoce, no se hacen hasta ahora tratamientos preventivos ni curativos. Se recomienda tener a su disposición los productos necesarios para los tratamientos (véase recomendaciones del experto en patología en el Manual France-Aquaculture).
Estos productos son:
El Treflán para los hongos y antibióticos para las enfermedades infecciosas (Necrosis).
Si se detectan hongos en las larvas (Lagenidium) ocasionando una mortandad, se puede utilizar este producto. El Treflán actúa de manera preventiva.
Se destruye con la luz, por eso hay que preparar las soluciones el día que se van a utilizar y guardarlas en frascos ámbar.
Se echa dos veces al día de manera sistemática en los tanques a las dosis siguientes:
| Estadio Nauplii | : 0,02 ppm |
| Estadio Zoea | : 0,03 ppm |
| Estadio mysis postlarvas | : 0,04 ppm |
Existen dos antibióticos eficaces para las necrosis.
La furazolidón y el cloranfenicol, cada uno se puede utilizar de manera preventiva o curativa.
Dosis de utilización en gramos de antibióticos/m3 después del recambio.
| Estadio | Furazolidón | Cloranfenicol | ||
| preventivo | curativo | preventivo | curativo | |
| Z1 | 0,2 | 1 | 2 | 1 |
| Z2 | 0,3 | 0,4 | 3 | 5 |
| Z3M1 | 0,4 | 0,5 | 4 | 6 |
| M2 | 0,5 | 0,6 | 5 | 8 |
| M3P1 | 0,5 | 0,7 | 5 | 8 |
| PL | 0,5 | 0,7 | 5 | 8 |
Los tratamientos preventivos se hacen cada dos días.
Los tratamientos curativos se hacen dos días seguidos :
segundo día : dosis curativa
Los tratamientos se hacen depués de recambios de agua, calculando la dosis sobre el volumen total del tanque después del recambio.
El cloranfenicol se echa cuando el nivel del tanque se encuentra aún bajo para que tenga más efectividad. La furazolidón se echa con el nivel alto.
Para disolver la furazolidón, añadir 1 ó 2 md de alcohol de un becher.
Informaciones y recomendaciones de utilización
Si las necrosis aparecen raramente, se puede utilizar el tratamiento curativo solamente en caso de aparición.
Si aparecen con frecuencia, establecer un tratamiento preventivo sistemático en todos los tanques y durante toda la cría.
Los tratamientos preventivos se hacen primero con la furazolidón, si su eficacia baja (antibioresistencia) después de aproximadamente dos meses, utilizar el cloranfenicol.
Saber que la utilización del cloranfenicol produce rápidamente antibioresistencias (2 semanas en uso continuo).
Si se hacen tratamientos preventivos, hay que hacer un tratamiento curativo cuando aparecen enfermedades.
Se puede utilizar la furazolidón en tratamiento preventivo y el cloranfenicol en curativo en caso de aparición de infección muy virulenta (el cloranfenicol es más fuerte).
Hay que tener mucho cuidado en la manipulación de los antibióticos para la salud de los utilizadores y del centro.
La densidad de 40 000 células de Chaetoceros por ml prescrita en las normas de Mysis l hasta Mysis 3 parece bastante alta pues las larvas de los estadios Mysis se alimentan mayormente de Naupliis, Artemias y micropleletizados. Sin embargo, siempre es bueno detener fitoplancton en los tanques, pero a estos estadios eso incrementa mucho la demanda de algas (debido a los recambios importantes de agua), para un beneficio relativo en alimento. Se podría eventualmente bajar progresivamente esta densidad de Mysis l a Mysis 3.
Utilizar los lavapies (agua clorada 200 ppm).
