Recomendaciones referentes a las modificaciones y trabajos necesarios en el Centro de Desove de Tunas de Zaza, a fin de poder lograr con éxito una producción a escala masiva de nauplii de buena calidad (lista presentada el 10 de Mayo y que no fue realizada al arranque del Centro):
Sacar algunos tanques de maduración, a fin de tener espacio de trabajo conveniente (50 cm en lugar de 30 cm) para poder practicar un buen manejo de estos grandes tanques (8.90 m de largo por 2,50 de ancho).
Colocar el sistema de malla protectora encima o alrededor de los tanques de maduración : para evitar la pérdida de camarones que podrían saltar (con 35 cm de profundidad en los tanques hay solamente 20 cm entre la superficie del agua y el borde del tanque).
Colocar doble entrada de agua por cada tanque y cambiar el sistema de suministro de aire en el fondo de los tanques a fin de mejorar la circulación y oxigenación del agua en estos grandes tanques de maduración.
Tapar el techo de la sala de maduración de tal manera que la iluminación promedio al nivel de la superficie del agua en los tanques de maduración, no sobrepase los 120 – 140 lux : la fuerte luminosidad tiene efectos negativos en el comportamiento y la maduración de los camarones.
Tapar los grandes espacios que quedan entre las paredes y el techo de la sala de maduración y colocar 2 extractores de aire (repartidos en el centro de la nave) a fin de evitar la entrada de polvos y varios insectos, controlar la iluminación y la temperatura del ambiente y facilitar los movimientos del aire para evitar la acumulación de aerosoles patógenos.
Colocar drenajes en el piso de la sala de maduración a fin de no tener acumulación de agua en las gravillas (desprovistos de drenaje) con los problemas bacteriológicos consecuentes.
Rectificar los drenajes de los pisos de las salas de desove y eclosión que están en mal estado para evitar la acumulación de agua.
Colocar 2 llaves de agua dulce en la sala de eclosión (que no tiene suministro) para efectuar las limpiezas diarias.
Realizar una caja de eclosión (tipo Aquacop) con 10612 filtros eclosionadores : para mejorar el proceso de eclosión previsto.
Realizar (facultativo) cascos recolectores (tipo Aquacop) para desove (colecta de huevos) y eclosión (colecta de nauplii) para disminuir las manipulaciones sobre los huevos y nauplii.
Efectuar una separación en el pasillo (de madera por ejemplo) entre los laboratorios y unidades de larvicultura y maduración-desove-eclosión con el objectivo de respetar las medidas profilácticas adecuadas.
Pintar de blanco (o aislar con lana de vidrio) todas las redes de agua salada que están en el aire y tapar todos los tanques de almacenamiento de agua salada (sedimentadores, declorinadores, cisternas de agua filtrada por cartuchos y tanques rectangulares de reserva) a fin de aislar al máximo todo el sistema de almacenamiento y suministro de agua salada de las variaciones térmicas (sol y lluvias) y de la salinidad (lluvias y evaporación), así como de las contaminaciones (polvos, insectos,…) del agua filtrada.
No tan que | Origen Reprod | Durac total días | Progenitores | % de mortalidad de Las hembras, 7 días después de ablación | Muertos contados(+) | Reprodu-desaparecidos(saltaron) | Total muertos(contados y desaparecidos) | % Mortalidad por día de producción | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
♀ | ♂ | TOTAL | ♀ | ♂ | TOTAL | ♀ | ♂ | TOTAL | ♀ | ♂ | TOTAL % | |||||
1 | T - N | 14 | 50 | 32 | 82 | No hubo | 36 | 3 | 47,6% | 11 | 3 | 31% | 47 | 24 | 86,6 | 6,2 % |
1' | C - N | 10 | 51 | 58 | 109 | No hubo | 18 | 26 | 40,4% | - | - | -(*) | 18 | 26 | 40,4 | 4,04 % |
2 | C - N | 5 | 34 | 35 | 69 | No hubo | 18 | 9 | 39,1% | - | - | -(*) | 18 | 9 | 39,1 | 7,8 % |
3 | T - N | 12 | 71 | 68 | 139 | (1) | 23 | 10 | 23,7% | 16 | 23 | 28% | 39 | 33 | 51,8 | 4, 3 % |
3' | C - N | 5 | 31 | 35 | 66 | No hubo | 8 | 5 | 19,7% | - | - | -(*) | 8 | 5 | 19,7 | 3,94 % |
4 | T - N | 38 | 79 | 63 | 142 | 25% | 32 | 5 | 26,1% | 17 | 21 | 26,8% | 49 | 26 | 52,8 | 1,39 % |
4' | C - N | 6 | 42 | 28 | 70 | No hubo | 18 | 5 | 32,8% | - | - | -(*) | 18 | 5 | 32,8 | 5,47 % |
5 | C - N | 5 | 31 | 30 | 61 | No hubo | 14 | 1 | 41% | - | - | -(*) | 14 | 11 | 41 | 8,2 % |
6 | T - E | 39 | 70 | 65 | 135 | 37% | 32 | 7 | 28,9% | 18 | 10 | 20,7% | 50 | 17 | 49,6 | 1,27 % |
7 | T - E | 39 | 37 | 45 | 82 | 31% | 7 | 6 | 15,8% | 20 | 32 | 63,4% | 27 | 38 | 79,3 | 2,03% |
8 | T - N | 15 | 52 | 21 | 73 | 12%(5 días) | 9 | - | 12,3% | 18 | 6 | 32,9% | 27 | 6 | 45,2 | 3,01 % |
9 | T - N | 42 | 96 | 42 | 138 | 21% | 28 | 12 | 29% | 28 | 30 | 37,7% | 56 | 42 | 71 | 1,69 % |
10 | T - N | 21 | 97 | 64 | 161 | 15% | 50 | 10 | 37,3% | 0 | 37 | 23% | 50 | 47 | 60,2 | 2,87 % |
12 | T - N | 21 | 60 | 60 | 120 | 6% | 9 | 3 | 10% | 19 | 20 | 32,5% | 28 | 23 | 42,5 | 2,02 % |
13 | T - N | 21 | 74 | 60 | 134 | 9,5% | 8 | 1 | 6,7% | 24 | 23 | 35,1% | 32 | 24 | 41,8 | 1,99 % |
TOTAL Y PROMEDIO | 296d. | 875 | 706 | 1581 | 18% (± 9,9%) | 310 | 113 | 26,75% | 171 | 223 | 32,7% | 481 | 336 | 51,7 | 3,75% | |
![]() | ![]() | ![]() | ||||||||||||||
423 | 394 | 817 | (± 2,27%) |
Leyenda: T: Tunas de Zaza
C: Cienfuegos
N: Medio natural
E: Estanque de cría progenitores (camaronicultura de Tunas de Zaza)
(1) : Reagrupamiento de los progenitores seleccionados de los tanques 4,8,10,12, y 13 ya ablacionados
(+) : Incluyendo la mortalidad durante el transporte (Bahía de Cienfuegos).
(*) : Tanques con malla protectora puesta.
Presentamos únicamente los datos de las conferencias que fueron desarrolladas ante el Personal de Maduración (Técnicos superiores, Técnicos medios y Operarios).
Objectivos y necesidades
Los diferentes métodos de cria de progenitores en cautiverio:
II.1. Aspectos preliminares y condiciones necesarias
II.2. Las principales técnicas de cria:
II.3. Importancia de la calidad del agua:
II.4. Importancia de la alimentación:
Almacenamiento/conservación de los alimentos frescos y peletizados.
La Técnica semiextensiva de cria de progenitores:
III.1. Los estanques:
III.2. Esquema de cria semiextensiva :
III.3. Preparación y control del medio de cultivo :
III.3.1. Preparación del estanque :
III.3.2. Puesta en agua del estanque :
III.3.3. Manejos y controles de rutina :
Controles y muestreos semanales y mensuales.
La Técnica intensiva de cria de progenitores :
IV.1. Los estanques :
IV.2. Esquema de cria intensiva :
Parámetros fisico-quimicos, densidades y alimentaciones requeridos en cada fase y etapa.
IV.3. Preparación y control del medio de cultivo:
IV.3.1. Preparación del estanque :
IV.3.2. El medio de cultivo :
IV.3.3. Manejos y controles de rutina :
Controles y muestreos semanales y mensuales
Operaciones sobre los animales :
V.I. Siembras y aclimataciones :
V.2. Cosechas
V.2.1. Cosechas parciales :
V.2.2. Cosecha total :
Cronograma de una cosecha total.
V.3. Selecciones de los animales :
V.4. Transportes y traslados de los progenitores :
V.5. Esquemas tipos de producción :
Esta conferencia fue desarrollada para profundizar los conocimientos esenciales de biologia y fisiologia de camarones a fin de que el personal de maduración pueda comprender la causa y la finalidad de las técnicas de maduración-desove-eclosión que hay que aplicar asi como poder actuar de manera eficiente en casos de nuevos problemas. Esta conferencia fue expuesta a la demanda de los técnicos.
Caracteristicas fundamentales de los crustáceos.
La muda (o exuviación) :
II.1. El tegumento :
II.2. Las variaciones morfologicas durance un ciclo de intermuda:
II.3. Variaciones de la sintesis de proteinas durante un ciclo de intermuda.
II.4. Variaciones de la composición de la hemolinfa durante un ciclo de intermuda :
II.5. Variaciones de los flujos de agua durante un ciclo de intermuda.
II.6. Control endocrino de la muda :
Factores exteriores influyendo sobre las frecuencias de muda.
La nutrición :
III.1. Generalidades sobre la toma de alimento y el aparato digestivo de los peneideos :
III.2. Funciones principales del hepatopancreas :
III.3. Variaciones de las secreciones enzimaticas :
III.4. Necesidades alimenticias :
III.4.1. La cantidad :
III.4.2. La cualidad :
La detección de los alimentos (chemoreceptores y cualidades organolépticas).
III.4.3. Proceso de almacenamiento de las reservas :
III.5. La excreción :
Excreción al nivel de las glándulas maxilares.
El medio interior :
IV.1. Generalidades sobre la hemolinfa.
IV.2. La osmoregulación :
IV.3. Los hidratos de carbono del medio interior.
IV.4. Las proteinas de la hemolinfa :
IV.4.1. La hemocianina :
IV.4.2. las otras proteinas disueltas :
Las diferentes lipoproteinas.
La reproducción :
V.1. Los aparatos reproductores :
V.1.1. Aparato genital de la hembra :
V.1.2. Aparato genital del macho :
V.1.3. Gládula endrógena y determinación del sexo.
VI.2. Reproducción/apareamiento y desove :
V.3. Endrocrinologia de la epedunculación :
Almacenamiento de los progenitores :
I.1. Objetivos
I.2. Parámetros fisico-quimicos, normas de funcionamiento, alimentación y manejo del estanque.
I.3. Rutina de trabajos diarios.
Maduración :
II.1. Objetivos
II.2. Los diferentes tanques y sus instalaciones :
II.3. Parámetros fisico-quimicos y tratamientos del agua :
II.3.1. Iluminación/fotoperiodo :
II.3.2. Importancia del parámetro agua :
II.4. Importancia de la alimentación :
II.5. Producción :
II.5.1 Recepción/selección, aclimatación y tratamientos de los progenitores:
II.5.2. Biomasa máxima y proporción sexul en los tanques de maduración.
II.5.3. La ablación del pedúnculo ocular (o epedenculación):
II.5.4. Marcado de los progenitores :
II.5.5. Desarrollo de los ovarios y pesca de las hembras maduras:
II.5.6. Fecundación artificial y regeneración de los espermatoforos de los machos :
II.5.7. Determinación de la cantidad y cualidad de los espermatozoides de los machos :
II.5.8. Limpiezas, materiales, parámetros y datos.
II.5.9. Gestión de los tanques de maduración :
II.5.10. Profilaxis y vacio sanitario parcial.
DESOVE :
III.1. Objetivos.
III.2. Tanques de desove y cascos recolectores ede huevos (estructura y funcionamineto).
III.3. Normas de funcionamiento y tratamientos del agua :
III.4. Preparación de la sala y de los tanques de desove.
III.5. Colocación de las hembras por desovar.
III.6. Colecta de desove y observación de los abortos.
III.7. Limpieza de los huevos y tratamiento quimico posible (yodo).
III.8. Muestreos (conteos y porcentajes de fertilización) :
III.9. Recolección de datos.
III.10. Limpiezas diarias y profilaxis.
ECLOSION :
IV.1. Objetivos.
IV.2. Caja de eclosión (o incubador) y concentrador de nauplii.
IV.3. Normas de funcionamiento y tratamientos del agua :
IV.4. Preparación de la sala y de la caja de eclosión.
IV.5. Selección, recolecta, limpieza, conteos y observación de los nauplii.
IV.6. Recolección de datos.
IV.7. Limpiezas diarias y profilaxis.
GASTOS DE FUNCIONAMIENTO DEL DEPARTAMENTO MADURACION Y DETERMINACION DEL PRECIO DEL MILLAR DE NAUPLII PRODUCIDO.